K8·凯发(中国)

IF:10.9《Nano Today》山东第一医科大学董自亮:锰铝LDH介导酸中和-腺苷阻断双效调控激活cGAS-STING通路增强肿瘤放射免疫治疗
专栏:学术前沿
发布日期:2026-05-25
作者:K8·凯发(中国)科研

研究背景:

实体瘤代谢重编程以糖酵解失调和线粒体功能障碍为特征,引发严重缺氧并稳定化HIF-1α,进而驱动CD73过表达,将细胞外ATP转化为免疫抑制性腺苷(ADO)。ADO顺利获得结合细胞毒性T细胞和NK细胞上的A2A受体削弱其效应功能,同时扩增调节性T细胞(Tregs)和髓源性抑制细胞(MDSCs),加剧免疫抑制性肿瘤微环境。

传统放疗虽能诱导DNA损伤,却顺利获得DNA损伤-ATR-Chk1-STAT3通路上调存活肿瘤细胞CD73表达,形成富含ADO的微环境,驱动肿瘤转移和复发。同时,代谢紊乱导致细胞外酸中毒(pH 6.5–7.0),直接损害树突状细胞成熟和T细胞受体信号传导,并促进肿瘤相关巨噬细胞向免疫抑制性M2表型极化;酸中毒还顺利获得增强HIF-1α活性稳定CD73转录,与缺氧协同放大腺苷产生。放疗进一步加剧酸中毒,增加糖酵解通量并破坏血管完整性,加重缺氧。因此,亟需同时中和肿瘤酸中毒并阻断CD73-腺苷轴的策略,以增强放射免疫治疗疗效。


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针对上述问题,山东第一医科大学董自亮研究员团队团队设计了一种pH响应型锰/铝层状双氢氧化物纳米片(LDH NSs),负载CD73抑制剂PSB-12379(记为LDH@PSB),用于同步中和肿瘤酸中毒和阻断ADO介导的免疫抑制,以增强放射免疫治疗。该纳米片在弱酸性肿瘤微环境(pH ~6.5)下快速降解,提升细胞外pH并释放PSB-12379,抑制放疗诱导的CD73上调和ADO产生;同时释放的Mn²⁺离子激活cGAS-STING通路,协同放疗诱导的免疫原性细胞死亡(ICD),放大抗肿瘤免疫。在小鼠B16F10黑色素瘤和CT26结肠癌模型中,LDH@PSB联合放疗显著抑制肿瘤生长、延长生存期,并增加具有增强细胞毒性的肿瘤浸润CD8⁺ T细胞。联合anti-PD-1治疗进一步诱导全身免疫,根除远处肿瘤。该策略同时缓解肿瘤酸中毒、破坏ADO介导的免疫抑制并激活cGAS-STING信号,为增强放射免疫治疗给予了一种强效方法。该文章于 2026 年 1 月 31 日以《Dual metabolic restructuring against tumor acidosis and adenosine potentiates radioimmunotherapy via reinvigoration of CD8+ T lymphocytes为题发表于《Nano Today》(DOI:10.1016/j.nantod.2026.102997)。


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方案1. LDH@PSB纳米片的设计与机制示意图

(1)LDH@PSB纳米片的制备与表征

顺利获得共沉淀法(Mn/Al = 3/1)合成Mn/Al LDH纳米片,经静电相互作用负载PSB-12379。TEM显示LDH NSs呈六边形形貌,平均粒径约90.5 nm,AFM显示平均厚度约5.0 nm;HAADF-STEM元素mapping证实Mn、Al、O均匀分布。ICP-MS测得Mn和Al含量分别为31.8%和6.08%。PVP修饰后DLS尺寸从69.5 nm降至58.6 nm,分散稳定性改善;Zeta电位从+30.9 mV变为+4.4 mV,HPLC测定药物负载效率达84.8%。FTIR在580 cm⁻¹(Mn-O)和429 cm⁻¹(Al-O)处识别特征金属-氧振动,1650 cm⁻¹和1294 cm⁻¹处新吸收带对应PVP的-C=O和-C-N基团。XRD显示(003)、(006)、(009)、(018)和(110)晶面典型衍射峰,与标准PDF卡片(JCPDS No. 45-1475)一致。XPS证实Mn 2p₃/₂(642 eV)和Mn 2p₁/₂(653 eV)双峰,表明主要Mn²⁺氧化态。LDH@PSB NSs具有pH响应性:TEM显示pH 5.5时纳米片溶解而pH 7.4时结构完整,DLS尺寸从pH 7.4到5.5减少59.4%;pH 5.5条件下4小时内释放63.3% Mn²⁺和85.4% PSB,pH 6.5时释放15.6% Mn²⁺和37.6% PSB,pH 7.4时释放最小。BCECF比率成像验证该趋势,pH电极显示LDH@PSB浓度从0增至540 μg/mL时,pH从6.5升至7.4,证实其酸中和能力。


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图1. LDH@PSB NSs的制备与表征。(A)LDH@PSB NSs合成过程示意图。(B)LDH NSs的典型TEM图像。(C)LDH NSs的元素mapping图像。(D)LDH NSs的AFM图像。(E)裸LDH、PVP修饰LDH和LDH@PSB NSs的尺寸分布。(F)LDH、PVP-LDH和LDH@PSB NSs的Zeta电位测量。(G)LDH和PVP-LDH NSs的FTIR光谱。(H)LDH NSs的XRD图谱。(I)LDH NSs的全范围XPS光谱。(J)Mn 2p的高分辨XPS光谱,显示LDH NSs中的氧化态。(K)LDH@PSB NSs的pH响应降解行为和后续药物释放示意图。(L)不同pH条件下孵育后LDH@PSB NSs形貌的TEM图像。(M-N)不同pH值下Mn²⁺(M)和PSB-12379(N)从LDH@PSB NSs的累积释放曲线。(O-P)BCECF的多光谱荧光成像(O)和相应荧光强度定量分析(P)。(Q)LDH@PSB NSs在弱酸性缓冲液(pH 5.5和6.5)中的酸中和曲线。

(2)LDH@PSB NSs的体外放射增敏效应

酸性肿瘤微环境顺利获得增强DNA修复能力和延迟辐射诱导的G2/M期阻滞退出来促进放疗抵抗。LDH@PSB纳米颗粒在L929和NIH 3T3正常细胞中表现出可忽略不计的细胞毒性,具有良好的生物安全性。定量pH电极测量和BCECF荧光检测证实其可将培养基pH从6.5有效中和;细胞内红色荧光强度随时间递增,证实顺利获得内吞途径有效摄取,且CT26肿瘤细胞较3T3正常细胞显示出更强的荧光信号,表明癌细胞优先摄取。共聚焦成像与BCECF探针显示细胞内pH显著升高。γ-H2AX免疫荧光染色显示,pH 6.5条件下经LDH@PSB + X射线处理的CT26细胞DNA双链断裂显著增强,损伤水平与pH 7.4 + X射线组相当,且对CT26癌细胞的选择性增强优于3T3正常细胞。克隆形成实验验证了剂量依赖性放射增敏效应,流式细胞术和共聚焦荧光图像显示LDH@PSB + RT组ROS生成延长,凋亡率显著升高至约30.8%,活/死染色和MTT测定证实其显著诱导肿瘤细胞死亡。


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图2. LDH@PSB NSs放射增敏效应的体外评价。(A)LDH@PSB酸度中和行为和增强放射敏感性示意图。(B)与不同浓度LDH@PSB孵育的L929细胞的相对细胞活力(n = 6)。(C)0、1、2和4小时DiD标记LDH@PSB NSs的时间依赖性细胞摄取,顺利获得共聚焦荧光显微镜可视化。(D-E)CT26细胞经各种处理后γ-H2AX的免疫荧光染色(D)和定量平均荧光强度(E)。(F)CT26细胞经LDH@PSB NSs联合不同X射线照射(0、2、4、6和8 Gy)处理的克隆形成实验代表性图像。(G)CT26细胞经各种处理后细胞内ROS生成的共聚焦荧光成像。(H-I)各种处理后Annexin V/PI染色细胞凋亡的流式细胞术图(H)和相应定量分析(I)。(J)CT26细胞在不同pH条件(pH 7.4和6.5)下与LDH@PSB纳米片孵育后暴露于不同剂量X射线照射(0-8 Gy)的相对细胞活力。

(3)LDH@PSB NSs体外调控CD73表达和cGAS-STING激活

肿瘤细胞过表达代谢免疫检查点分子CD73,催化细胞外ATP转化为免疫抑制性腺苷(ADO),抑制抗肿瘤免疫反应,且放疗进一步上调CD73表达。Western blot分析显示,X射线照射和LDH均显著上调CT26、4T1、B16F10肿瘤细胞CD73蛋白,而预孵育LDH@PSB后接受X射线照射的细胞CD73表达显著受抑,证实PSB-12379可减弱放疗诱导的CD73上调;正常3T3细胞中未观察到辐射诱导的CD73上调,表明该反应具有肿瘤特异性。照射后2小时,LDH+RT和LDH@PSB+RT组ATP释放均显著增加;24小时时LDH+RT组ATP水平显著下降,而LDH@PSB+RT组维持高水平细胞外ATP,且ADO产生显著降低,证实PSB-12379阻断ATP酶促水解。Western blot显示LDH@PSB+RT组磷酸化STING(p-STING)、TBK1和IRF3蛋白表达显著增加,与游离Mn²⁺和商用STING激动剂MSA-2阳性对照模式一致;qPCR分析显示该组CXCL-10、IFN-β和IL-1β转录水平最高,甚至超过阳性对照。共聚焦荧光成像显示LDH@PSB+RT组细胞表面CRT暴露最强,细胞内HMGB1荧光几乎消失,证实其有效诱导免疫原性细胞死亡(ICD)。


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图3. LDH@PSB介导的辐射诱导CD73上调抑制和cGAS-STING通路激活。(A)X射线辐射后各种肿瘤细胞中CD73上调及其被LDH@PSB NSs抑制的示意图。(B-C)不同处理下CT26、B16F10和4T1细胞中CD73表达的流式细胞术分析(B)和相应定量比较(C)。(D)不同处理后肿瘤细胞在2h和24h分泌的外源性ATP水平。(E)不同处理后肿瘤细胞在24h分泌的外源性ADO水平。(F)LDH@PSB介导的ATP水解为免疫抑制性代谢物ADO的抑制示意图。(G)不同处理后STING通路激活的Western blot分析。(H-J)不同处理后CXCL10(H)、IFN-β(I)和IL-1β(J)mRNA表达水平的qPCR分析。(K)不同处理后CRT暴露和HMGB1释放的免疫荧光图像。(L)LDH@PSB释放Mn²⁺触发cGAS-STING通路激活的示意图。

(4)LDH@PSB联合RT体外免疫激活评价

免疫刺激信号可促进树突状细胞(DC)成熟。将小鼠骨髓来源树突状细胞(BMDCs)与经不同处理的CT26细胞上清液共孵育后,LDH@PSB+RT组DC成熟率达42.6%,为对照组的2.89倍,且显著诱导TNF-α、IFN-γ、IL-6和IL-12p70等炎症细胞因子分泌。使用CFSE标记T细胞评估增殖,流式细胞术显示LDH@PSB+RT组增殖率约73.8%,显著优于LDH+RT组,归因于酸度中和与CD73抑制的协同效应。该组共培养上清液中ATP水平显著升高而ADO水平降低,证实有效抑制ADO生成并保留免疫刺激性ATP。进一步分析显示,LDH@PSB+RT组CD69⁺ T细胞比例最高,Granzyme B(GzmB)和IFN-γ表达显著升高,同时PD-1和TIGIT等耗竭标志物表达显著降低,提示有效逆转T细胞功能障碍;该组IFN-γ和IL-12p70水平亦最高,反映T细胞激活与免疫刺激增强。


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图4. LDH@PSB联合放疗诱导ICD和T细胞激活的体外评价。(A)LDH@PSB介导的放疗增敏ICD效应导致DC成熟的示意图。(B-C)DC成熟的流式细胞术分析(B)和DC成熟百分比定量(C)。(D)LDH@PSB和RT触发增强T细胞功能和炎症细胞因子分泌的示意图。(E-F)CFSE标记CD8⁺ T细胞增殖的流式细胞术图(E)和定量(F)。(G-J)关键CD8⁺ T细胞细胞毒性效应分子IFN-γ(G,H)和Granzyme B(I,J)的流式细胞术分析和定量。(K-L)不同处理后CD8⁺ T细胞上耗竭标志物PD-1表达的流式细胞术分析(K)和定量(L)。(M-N)炎症细胞因子分泌水平的ELISA分析,包括IFN-γ(M)和IL-12p70(N)。(O)LDH@PSB介导的肿瘤酸中毒和ADO双重代谢调节使T细胞从耗竭转变为激活的表型变化示意图。

(5)LDH@PSB联合RT的体内抗肿瘤效应评价

DiD标记的LDH@PSB在CT26肿瘤模型中主要特异性蓄积于肿瘤内,24小时达峰值,72小时逐渐降低,ICP-MS定量锰离子分布趋势一致,证实其肿瘤靶向蓄积与代谢清除;BCECF探针瘤内pH mapping证实有效中和酸性肿瘤微环境。CT26荷瘤小鼠分组治疗后,LDH@PSB+RT组γ-H2AX免疫荧光呈强红色荧光,CD73表达受抑,肿瘤完全根除并实现长期无瘤生存,无显著体重波动;CRT和HMGB1染色证实有效诱导免疫原性细胞死亡(ICD)。对治愈小鼠以4T1细胞再次攻击,肿瘤生长与对照组无差异,表明免疫记忆具有CT26抗原特异性。B16F10黑色素瘤模型中,LDH@PSB+RT组肿瘤生长抑制最显著,生存期延长,H&E和TUNEL证实肿瘤组织损伤与凋亡最强;流式细胞术显示该组肿瘤内CD8⁺CD3⁺ T细胞比例增加,CD69表达升高,IFN-γ⁺CD8⁺ T细胞比例达72.6%(对照组24.8%的2.92倍),血清及肿瘤上清液中TNF-α、IFN-γ、IL-6、IL-1β和IL-12p70水平显著升高,证实其有效增强免疫细胞浸润、细胞毒性T淋巴细胞激活及促炎细胞因子释放,诱导强劲抗肿瘤免疫反应。


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图5. LDH@PSB联合RT对CT26荷瘤小鼠模型抗肿瘤效应的体内评价。(A)CT26荷瘤小鼠模型中治疗方案和时间线示意图。(B-C)各种处理后肿瘤组织中γ-H2AX的免疫荧光染色图像(B)和相应定量荧光分析(C)。(D-E)各种处理后肿瘤中CD73表达的免疫荧光图像(D)和相应定量荧光分析(E)。(F)不同处理后的平均肿瘤生长曲线。(G)不同治疗组小鼠的生存曲线。(H)所有治疗组每只小鼠的个体肿瘤生长曲线。(I)CT26荷瘤小鼠整个监测期间的体重变化。(J-K)各种处理后肿瘤组织中CRT(J)和HMGB1(K)的免疫荧光染色图像。(L)各种处理后肿瘤组织中CRT和HMGB1表达的定量荧光强度分析。


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图6. LDH@PSB联合RT对B16F10荷瘤小鼠模型抗肿瘤疗效和免疫反应的体内评价。(A)B16F10荷瘤小鼠模型中治疗方案和时间线示意图。(B-C)不同治疗组的平均(B)和个体(C)肿瘤生长曲线。(D)不同治疗组小鼠的生存曲线。(E)治疗期间CT26荷瘤小鼠的体重变化。(F-G)各种处理后肿瘤组织中CD8⁺ T细胞群体的流式细胞术图(F)和相应定量(G)。(H-I)各种处理后CD8⁺ T细胞中IFN-γ⁺的流式细胞术图(H)和相应定量(I)。(J)不同处理后肿瘤组织中活化CD8⁺ T细胞(CD69⁺)的比例。(K)不同处理后肿瘤组织中NK细胞(NK1.1⁺CD3⁻CD45⁺)的百分比。(L-M)不同处理后肿瘤组织中抗肿瘤细胞因子分泌水平的ELISA检测,包括IL-1β(L)和IL-12p70(M)。(N-Q)不同处理后肿瘤组织中CD45⁺(N,O)、CD3⁺(N,P)和CD8⁺(N,Q)免疫细胞的免疫荧光染色图像和相应定量分析。

(6)LDH@PSB + RT联合免疫检查点阻断的远隔效应

为进一步研究LDH基础治疗联合免疫检查点阻断的潜力,研究团队建立了双侧B16F10黑色素瘤模型,以评估对原发和远处肿瘤的抑制。治疗包括aPD-1、LDH@PSB + RT和LDH@PSB + RT + aPD-1。观察到LDH@PSB + aPD-1检查点阻断治疗的联合对原发和远处肿瘤生长均表现出实质性抑制,所有五只小鼠存活。在整个治疗期间,未观察到显著的体重变化,表明优异的生物安全性。免疫荧光染色进一步显示,联合组两个肿瘤部位中CD3⁺和CD8⁺ T细胞浸润显著增加,提示强劲的全身免疫激活。这些结果表明,LDH@PSB + RT与aPD-1检查点阻断的联合不仅增强了局部肿瘤控制,还引发了强效的远隔效应,有效抑制了远处肿瘤生长。


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图7. LDH@PSB + RT联合免疫检查点阻断的远隔效应。(A)双侧B16F10肿瘤模型的建立和相应治疗方案示意图。(B)不同处理后小鼠原发和远处肿瘤的生长曲线。(C)各种处理后小鼠的存活率。(D)B16F10荷瘤小鼠治疗期间的体重变化。(E)不同处理后原发肿瘤(E,F)和远处肿瘤(E,G)中CD3⁺和CD8⁺ T细胞的免疫荧光染色图像和相应定量分析。(H)LDH@PSB联合RT和anti-PD-1治疗协同抗肿瘤免疫效应的拟议机制示意图。

 研究小结 

本研究针对实体瘤中肿瘤酸中毒与腺苷(ADO)积累引发的 T 细胞耗竭、放疗抵抗及免疫抑制核心问题,设计了 pH 响应型锰铝层状双氢氧化物纳米片(Mn/Al-LDH),顺利获得静电作用负载 CD73 抑制剂 PSB-12379 构建多功能纳米平台(LDH@PSB)。该平台可在肿瘤酸性微环境中特异性降解,同步实现肿瘤酸中毒中和、CD73-ADO 免疫抑制通路阻断的双代谢调控,同时释放的 Mn²+ 激活 cGAS-STING 通路,协同放疗诱导的免疫原性细胞死亡(ICD)放大先天与适应性抗肿瘤免疫。研究顺利获得材料理化表征、体外细胞功能实验、体内小鼠荷瘤模型验证,系统阐明了 LDH@PSB 的理化特性、作用机制及抗肿瘤疗效,并进一步探索其与抗 PD-1 免疫检查点阻断联用对远处肿瘤的根除效果,为提升实体瘤放射免疫治疗疗效给予了新型纳米医学解决方案。

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下一页:IF:10.8《eBioMedicine》上海交大陆海霞/复旦大学陈兴栋、蒋艳峰:口腔微生物组扰动将牙周健康与认知衰老关联于大型社区队列

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